Western Blot實驗流程

1、蛋白質抽提

A、實驗對象為組織樣品，取適量（250-500mg）新鮮組織樣品，加1ml含蛋白酶抑制劑的總蛋白抽提試劑（或核蛋白抽提試劑），勻漿后抽提總蛋白。

B、實驗對象為細胞樣品，每份樣品取1×106～1×107細胞，PBS清洗細胞，去PBS加0.1ml~1ml含蛋白酶抑制劑的總蛋白抽提試劑（或核蛋白抽提試劑）抽提總蛋白。

2、蛋白質定量

按KCTMBCA蛋白質定量試劑盒操作說明操作，測定樣品濃度。

3、變性聚丙烯酰胺不連續(xù)凝膠電泳(SDS-PAGE)

將準備好的樣品液和生物素標記的蛋白質分子量標準分別上樣，標準加進*個孔中，電泳分離蛋白。

4、蛋白質轉移到硝酸纖維膜或PVDF膜

5、膜的封閉和抗體孵育

A、膜在5％BSA溶液中室溫孵育1小時以封閉膜上的非特異結合。

B、封閉過的膜加入一級抗體室溫孵育1.5小時，抗原抗體結合。

C、加入HRP標記的二級抗體以結合一級抗體及HRP標記的抗生物素抗體以結合分子量標準，室溫孵育膜1小時。加入HRP標記的GAPDH抗體可同時檢測GAPDH含量。

6、結果檢測

化學發(fā)光法檢測，膜與化學發(fā)光底物孵育，經(jīng)X膠片曝光顯影。圖片掃描保存為電腦文件，并用ImageJ分析軟件將圖片上每個特異條帶灰度值的數(shù)字化。

7、數(shù)據(jù)分析

目的蛋白的灰度值除以內參GAPDF的灰度值以校正誤差，所得結果代表某樣品的目的蛋白相對含量。

8、提供實驗報告

包括詳細的實驗方法及Western Blot實驗結果。

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